目前常用于制作骨缺損動物模型的動物有小鼠，大鼠，兔，犬，豬，羊等。

骨缺損動物模型理論上是選擇越大型的動物越好，比如犬，豬，羊等。

一則越大型的動物骨折愈合機制與人類越相似;再則越大型的動物制作過程中越易于操作。大型動物也有實驗成本過高，樣本數量難以保證的現實缺點。

小鼠模型價格低廉，來源廣泛，小鼠自身具有較強的抗感染及耐受手術的能力，且圍手術期易于管理，因此小鼠模型具有一定優勢。

一般小鼠選擇2到3個月的小鼠作為模型，雌兔選擇6到10個月的兔作為模型。

骨缺損模型構建骨缺損部位選擇

骨缺損的部位可以劃分為負重部位骨缺損與不負重部位骨缺損兩類。

機械性骨損傷

機械性骨缺損可用于模擬創傷或手術導致部分骨受損或缺失的情況。

1.顱骨缺損模型

顱骨是研究原位骨愈合常用的手術部位之一，動物選小型嚙齒類動物，如小鼠、大鼠。

造模舉例：

通常選取成年雄性大鼠，鹽suan氯an酮(40mg/kg)與鹽酸甲苯噻嗪(8mg/kg)聯合麻醉，也有采用10%水he氯醛(4ml/kg)腹腔注射麻醉。大鼠頭顱備皮、消毒鋪巾后，從鼻骨開始，沿顱骨矢狀線取縱行手術切口，長約1.5～3cm，逐層分離軟組織，充分顯露矢狀縫、雙側頂骨及部分額骨和枕骨。

根據圓形缺損直徑大小的不同，在不同部位進行鉆孔建模，直徑≤6mm一般在雙側頂骨處鉆孔；直徑＞6mm一般以矢狀縫為中心進行鉆孔。鉆孔前需將骨膜充分剝離，將不同直徑的空心鉆頭連接電鉆后，低速(≤1500rpm)鉆取，鉆取過程中助手用生理鹽水滴注(1滴/2s)降溫。鉆取時動作需輕柔(單純憑借電鉆的自然重力，盡量不附加外力)，避免將骨組織全鉆穿，接近鉆穿時用剝離器沿著圓形缺損周邊進行鈍性分離，從而避免硬腦膜及其下方的血管、腦組織的損傷。生理鹽水沖洗術野，探查無活動性出血后，用0號線逐層關閉皮下組織、皮膚切口。術后大鼠側臥于30℃恒溫臺進行麻醉復蘇，全清醒后送回飼養籠繼續喂養，于術后8～12h，20～24h，32～36h分別予以丁丙nuo啡(0.05mg/kg)腹腔注射鎮痛。

大鼠的種系一般選擇SpragueDawley(SD)大鼠和Wistar大鼠，這兩個品種的大鼠生長較快、繁殖能力強，容易飼養，對傳染病的抵抗力較強。

通常采用成年的雄性大鼠進行動物實驗，SD大鼠一般＞12周(體重300～350g)。

大鼠顱骨中常用的臨界骨缺損直徑為５～８mm。一般認為，這種５mm骨缺損的優點是每只動物能誘發兩個缺陷，避免跨越矢狀縫。

顱骨缺損模型在研究中應用廣泛，是可用組織學和放射學分析的標準化骨缺損，可用于評估骨組織工程生物材料之間的差異，缺點是無法評估生物材料在生理力學載荷下的性能。

2.大鼠股骨髁臨界性骨缺損模型：

  .選擇8周齡雄性SD大鼠作為實驗對象，體重范圍為250-300克。

  .使用1%wubabituona進行麻醉，并通過膝關節內側作一1 cm縱行切口，逐層分離組織以暴露股骨內側髁。

  .在內側髁幾何中心處使用高速電鉆垂直于骨面制造骨缺損，直徑可根據研究需求設定在2-4 mm之間，深度通常為4 mm。

  .術后進行抗生素處理以防感染，并對骨缺損愈合情況進行觀察和評估。

 3.脛骨大段骨缺損模型：

  .使用10周齡SD雄性大鼠，通過waikeshoushu在右脛骨中部制造4 mm的骨缺損。

  .固定裝置可以采用定制的六孔不銹鋼板、1 mm直徑的Kirschner針或圓形外部固定器。

  .記錄建模時間、出血量和肢體腫脹持續時間，以評估不同固定方式的效果。

4.小鼠骨缺損模型構建：

  .構建可評價注射式再生支架修復效果的小鼠骨缺損模型，具體方法可能涉及在小鼠骨骼中制造標準化的骨缺損，并植入再生支架材料。

在構建骨缺損模型時，應嚴格遵守實驗室安全規程和動物福利標準。模型的成功構建通常需要通過X射線、CT掃描或肉眼觀察來確認骨缺損的大小和形狀，以及固定裝置的穩定性。此外，應記錄所有手術過程中的關鍵參數，如出血量、手術時間和術后并發癥，以確保模型的重復性和可比性。

請注意，上述信息是基于新的搜索結果，確保了時效性和相關性。在進行實驗之前，建議詳細閱讀相關的實驗協議和新的科學文獻。

參考

[1]陳仁杰與于騰波, 大鼠股骨髁臨界性骨缺損模型制備及臨界值. 臨床醫學進展, 2023. 13(4): 第5666-5671頁.

[2]王飛燕等, 可評價注射式再生支架修復效果的小鼠骨缺損模型的構建研究. 中國實驗動物學報, 2023. 31(08): 第985-992頁.

[3]申震等, 基于Masquelet誘導膜技術比較不同固定方式構建的脛骨大段骨缺損模型. 中國實驗動物學報, 2018. 26(06): 第673-680頁.